巨噬細胞是機體免疫系統的重要細胞成分，具有抗感染、抗腫瘤和參與免疫應答、免疫調節等生物學功能，是研究細胞吞噬、細胞免疫和炎癥的重要對象。
巨噬細胞的極化
巨噬細胞具有異質性和多樣性，可在不同的組織微環境和生理病理條件下，轉化為不同的表型，稱為巨噬細胞的極化。
巨噬細胞組織分布多樣性和異質性的特點，使之一直以來都是科研工作者們熱門研究的對象。
根據細胞表面標記分子、細胞因子分泌及代謝相關基因特征，巨噬細胞通常被分為經典活化的M1型巨噬細胞（促炎）和選擇性活化的M2型巨噬細胞（抗炎）。
■ M1型巨噬細胞表達MHC II、CD80、CD86和 CD16/32，分泌TNF-α、IL-6和IL-12等促炎因子，以及CXCL9、CXCL10和CXCL11等趨化因子。
■ 另外，M2型巨噬細胞高表達arginase-1(Arg1)和CD206，分泌抗炎因子IL-10以及CCL2、CCL17和CCL22等趨化因子。
巨噬細胞極化的體外研究，通常使用脂多糖（LPS）和干擾素（IFN-γ）等TLR激動劑誘導M1型極化，使用IL-4或IL-13等誘導M2型極化，然后記錄基因表達、細胞表面標志物及蛋白質含量和活性的變化。
原代小鼠巨噬細胞可以從多個部位獲得：比如骨髓、腹腔、肺或脂肪組織等。目前巨噬細胞的分離的方法主要包括貼壁篩選法、密度梯度離心法、酶消化法、流式細胞儀分離法等。
下面具體介紹小鼠腹腔巨噬細胞和骨髓來源巨噬細胞的提取和分離。
腹腔巨噬細胞提取
巨噬細胞天然存在于小鼠腹腔，腹腔巨噬細胞多游離存在于腹水中易于獲得：用生理鹽水或細胞培養基沖洗腹腔后抽取腹腔灌洗液體，即可獲取其中的巨噬細胞。
以下為具體實驗方案：
（1）巨噬細胞的誘導
在實驗前3天，連續3天給小鼠腹腔注射1mL的3%巰基乙酸鹽肉湯，每天1次。（肉湯刺激是非感染性炎癥刺激，能促進巨噬細胞的聚集）
注：
■ 腹腔注射是關鍵，給肉湯時記得回抽，切記不能刺到器官導致小鼠腹腔出血，否則會使提取的巨噬細胞不純。
■ 硫乙醇酸鹽的作用是將巨噬細胞由外周血中釋放入腹腔中，可提取更多的巨噬細胞用于實驗，腹腔巨噬細胞多為M1促炎型。
（2）3天后，收集巨噬細胞
① 處死小鼠
準備75%乙醇，小鼠麻醉后，以脫頸方式處死小鼠，將小鼠置于75%乙醇中浸泡3-5min進行滅菌消毒處理后（注：使小鼠的腹腔朝下浸沒在酒精中），移入超凈臺，仰臥位固定小鼠。
② 暴露腹膜
將小鼠外皮拉起，沿腹部剪開一個小口（注意勿將腹膜剪破），再剪開整個腹部皮膚，捏住兩側皮膚慢慢向兩邊撕開，使腹膜暴露。
③ 向腹腔注射生理鹽水或細胞培養基：
于右下腹部將5mL預冷的PBS（或5mL預冷的10%血清RPMI-1640培養液）緩緩注入腹腔（注意不要抽進空氣），輕揉小鼠腹部數次，靜置3-5min，使液體在腹腔內充分流動。
注：
■ 腹腔注射直接會接觸表皮，易污染，此步驟需要多加注意。
■ 腹腔注射培養基后，按壓動作要輕柔緩慢，以防培養基從針孔溢出。
④ 抽取腹腔液，轉移至離心管中（反復沖洗腹膜腔灌洗液2次）。
（3）巨噬細胞的純化與培養
將收集的腹腔灌洗液于常溫條件下1000r /min 離心5min，棄去上清，所得細胞沉淀用RPMI-1640培養液重懸接種，培養體系于37℃靜置培養2～3h后，洗去未貼壁細胞，余下的貼壁細胞即為巨噬細胞。
注：由于腹腔巨噬細胞的粘附能力不強，清洗的時候動作要盡可能輕。
注意事項
■ 小鼠腹腔注射刺激物時不要刺破內臟，可以在操作過程中將小鼠頭部向下抓取，使其腹部內容物滑向膈下以避開注射器針頭；
■ 若回收的小鼠腹腔灌洗液過少，可另外注入預冷的PBS重復灌洗；
■ 若不小心致腹腔出血，可在腹腔液離心后重懸時加入5倍細胞懸液體積的紅細胞裂解液，再次離心棄上層紅色液體。
■ 盡量避免被小鼠咬傷或吸過小鼠腹腔液的針頭扎傷，一旦被咬傷或扎傷，要到專門機構盡快注射出血熱疫苗，如果創面大，需同時注射破傷風疫苗。
骨髓來源巨噬細胞的提取
在原代巨噬細胞的獲取中，直接分離的腹腔巨噬細胞（或者肺泡巨噬細胞）數量有限，在未經誘導時，每只小鼠只能獲取1.5-3×106個腹腔巨噬細胞，不能滿足某些實驗的需求，因此骨髓誘導分化的巨噬細胞（Bone marrow-derived macrophages，BMDM）是目前實驗室常用的分離小鼠巨噬細胞的選擇。
以下為具體實驗方案：
（1）誘導因子的獲取
M-CSF是一種誘導骨髓細胞向M2型巨噬細胞分化的誘導因子，獲取的途徑有兩種：
1）找商業化的細胞因子產品直接購買，但不同廠家的細胞因子活性差異較大，需仔細甄別。M-CSF的使用濃度在20-50ng/mL即可。
2）自己培養能夠分泌這種細胞因子的細胞，其中L929細胞上清含有較高活性M-GSF以及其它多種細胞因子，比如VEGF、MCP-1、MIG、IL-9/10等。該培養體系可以在短時間內獲得大量巨噬細胞樣的細胞，并且該體系不適合其它細胞生長，因而其它各系細胞會逐步死亡，經換液去除懸浮細胞后，最終可以獲得大量純化的骨髓巨噬細胞樣細胞。
（2）骨髓巨噬細胞的分離
1）取腿骨
準備75%乙醇，小鼠麻醉后，脊髓脫臼法處死小鼠，將小鼠置于75%乙醇中浸泡5min進行滅菌消毒處理；
轉移到超凈工作臺，固定小鼠上肢，用剪刀從腹部中線剪開，取其雙側股骨和脛骨，剔除骨上附著的肌肉和組織（注意：應盡量將肌肉組織去除，只留下骨頭，整個過程務必保持股骨及脛骨的完整性！）
將去皮去肉的股骨、脛骨放置在含有75%乙醇的培養皿內浸泡5min（注：75%乙醇對骨髓細胞沒有影響，但盡量要控制在5 min之內），然后用冷的PBS浸泡，洗去脛骨、股骨表面的乙醇，5min。
2）骨髓巨噬細胞提取和誘導
將清洗好的股骨、脛骨分開，并用剪刀分別將股骨、脛骨兩端剪斷，使用1-2mL注射器吸取冷的誘導培養基將骨髓從股骨、脛骨中吹出，反復吹洗3次，直至骨內看不到明顯的紅色為止。
此時可能會有紅色條狀物質，這是聚集的骨髓細胞，用5mL移液槍將含有骨髓細胞的培養基反復吹打，將塊狀的細胞團吹散。
然后使用70μm細胞濾器將細胞過篩，轉移至15mL離心管中，1500rpm/min離心5min，棄上清。
加入紅細胞裂解液重懸，輕彈管底，混懸細胞沉淀，靜置5min后，加入10 mL 冰PBS進行洗滌，4°C，1500rpm/min離心5min，棄上清（必要時重復，直至細胞團塊紅色部分明顯減少），用冷的配置好的骨髓巨噬細胞誘導培養基重懸，鋪板。
細胞培養期間，每隔2-3天更換新鮮骨髓來源巨噬細胞培養基，加入培養基前用PBS清洗細胞，培養7天后收集細胞。
注意事項：
■ 骨髓巨噬細胞不可傳代，不可以用胰酶消化，使用時可用細胞刮直接刮下來或者用槍吹打下來，然后離心計數即可用于實驗。
■ 建議直接鋪板用于后續實驗，更換培養容器會損傷細胞。
■ 細胞誘導成功后要及時使用，不宜長時間培養。
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